MT0010 TRIzol試劑

產(chǎn)品簡介
北京百奧萊博供應(yīng)的TRIzol試劑用于生化實驗研究等領(lǐng)域,TRIzol試劑是我司眾多優(yōu)質(zhì)RNA提取純化之一,質(zhì)量堪比同類進(jìn)口產(chǎn)品,價格非常優(yōu)惠,目前正熱烈促銷中,恭候您的咨詢訂購。...
產(chǎn)品詳細(xì)介紹
特別提示:包括TRIzol試劑在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實驗,嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:TRIzol試劑
英文名稱:TRIzol Reagent
產(chǎn)品貨號:MT0010
產(chǎn)品規(guī)格:100ml
TRIzol Reagent是一種可用于提取動植物和細(xì)菌來源的組織或細(xì)胞RNA的制品。樣本在進(jìn)行勻漿的過程中,TRIzol Reagent能夠充分破壞細(xì)胞,裂解細(xì)胞內(nèi)含物,同時可抑制RNA酶的活性,從而保持RNA的完整性。TRIzol Reagent具有很強的廣譜性,可以適用于各種樣品的總RNA提取,提取過程方便快速,整個操作在一小時內(nèi)便可以完成。該試劑可用于小量樣品(20-100mg組織、1×106細(xì)胞)也適用于大量樣品(≥1g組織、>107細(xì)胞);對人、動物、植物組織、細(xì)菌均適用,可同時處理大量不同樣品,整個提取過程在一小時內(nèi)即可完成。分離的總RNA無蛋白質(zhì)和DNA污染,可用于Northern Blot、Dot blot、ployA篩選、體外翻譯、RNase保護(hù)分析和基因克隆。
樣本量及 RNA 產(chǎn)量:
樣本類型 | 樣本量 | 產(chǎn)量 |
白細(xì)胞 | 1×106個 | 10~20μg |
植物材料 | 25mg | 10~20μg |
細(xì)胞 | 1×106個 | 8~15μg |
肌肉/腦等組織 | 50mg | 10~25μg |
肝臟組織 | 50mg | 100~300μg |
儲存:2-8℃避光保存,可保存 2 年。
注意:該試劑含有強變性劑,請勿直接于皮膚接觸或吞咽,若接觸到皮膚或眼睛請盡快到醫(yī)院處理。實驗時務(wù)必穿實驗服,戴手套。
自備試劑:氯fǎng,異丙醇,70%乙醇(DEPC 水配置),RNase-Free H2O。
操作方法:
一、實驗前準(zhǔn)備:
RNA 制備的關(guān)鍵是要抑制細(xì)胞中的RNA 分解酶和防止所用器具及試劑中的RNA 分解酶的污染。因此,在實驗中必須采取以下措施:戴一次性干凈手套;使用RNA 操作專用實驗臺;在操作過程中避免講話等等。通過以上辦法可以防止實驗者的汗液、唾液中的RNA 分解酶的污染。
注意事項:
1. 盡量使用一次性塑料器皿,若用玻璃器皿,應(yīng)在使用前用0.1%DEPC 水溶液在37℃處理 12h,然后在120℃高壓滅30分鐘 以除去殘留的DEPC。
2. 用于 RNA 實驗的試劑,須使用干熱滅菌(180℃,60min)或使用上述方法進(jìn)行 DEPC 水處理滅菌后的玻璃容器盛裝(也可以使用RNA 實驗用的一次性塑料容器),使用的無菌水須用0.1%的DEPC 處理后再進(jìn)行高溫高壓滅菌。
3. RNA 實驗用的試劑和無菌水都應(yīng)專用,避免混用后交叉污染。
二、實驗操作:
TRIzol Reagent的使用量情況如下:
10cm2貼壁培養(yǎng)細(xì)胞 | 1ml |
1×106~10×106懸浮培養(yǎng)細(xì)胞 | 1ml |
50-100mg的普通組織樣品(肌肉等) | 1ml |
30-50mg的特殊組織樣品(肝、脾等) | 1-2ml |
30-50mg的植物材料 | 1ml |
白細(xì)胞(1×106) | 1ml |
TRIzol 使用方法:
貼壁細(xì)胞 | 懸浮細(xì)胞、酵母、細(xì)菌 | 動植物組織 | |
1.樣品預(yù)處理 | 每 10 cm2 生長的培養(yǎng)細(xì)胞中倒出培 養(yǎng)液,用PBS 清洗一次,盡可能移 除多余的溶液。 | 將懸浮培養(yǎng)細(xì)胞連同培養(yǎng)液一起 倒入離心管中,8,000 rpm離心2分鐘,棄上清,加入50μl無菌水 重懸細(xì)胞至無明顯沉淀。 | 將樣品轉(zhuǎn)移至用液氮預(yù)冷的研缽中,用研杵研磨組織,其間不斷加 入液氮,直至研磨成粉末狀。 |
2.加入TRIzol | 加入1ml TRIzol,使裂解液均勻分布 于細(xì)胞表面,然后使用移液槍吹打細(xì) 胞使其脫落。將細(xì)胞的裂解液轉(zhuǎn)移至 1.5ml EP管中。 | 加入1ml TRIzol。 | 將研磨好的組織加入到裝有 1ml TRIzol的1.5ml EP管中。 |
3.裂解樣品 | 加入TRIzol 后立即手腕用力上下顛倒至細(xì)胞、組織粉末等分散均勻,無塊狀物。室溫靜置 5分鐘,使核酸蛋白 復(fù)合物完全分離。 | ||
4.加氯fǎng | 加入200μl 氯fǎng,手腕用力振蕩 15s,室溫放置 2分鐘。 | ||
5.離心分層 | 13000rpm離心10分鐘,吸取600μl無色上清至新的1.5EP管中。 | ||
6.加異丙醇 | 向上述600μl上清液中加入600μl 異丙醇,手腕用力上下顛倒數(shù)次,于-20℃放置 5分鐘。 | ||
7.離心沉淀總RNA | 13000rpm離心10分鐘,小心倒掉上清,留取底部總RNA 沉淀。 | ||
8.漂洗總RNA | 向沉淀中每管加入1ml 70%乙醇,上下顛倒數(shù)次,13000rpm離心5分鐘,小心倒掉上清,留取底部 RNA 沉淀。 | ||
9.重復(fù)漂洗一次 | 重復(fù)步驟8再洗滌一次。 | ||
10.揮發(fā)殘留乙醇 | 倒掉洗液,再次短離心10s 后,用10μl Tip 頭吸干剩余的洗液,置于室溫使乙醇揮發(fā)干凈(~20分鐘)。 | ||
11.溶解總RNA | 每管加入20~100μl TE Buffer或Rnase-Free H2O溶解總RNA。 |
常見問題分析:
1.抽提率低。
可能原因:
a. 樣品裂解或勻漿處理不徹底;
b. RNA 沉淀未完全溶解。
2.A260/A280<1.65。
可能原因:
a. 檢測吸光度時,RNA 樣品沒有溶于水,而溶于了TE中;
b.樣品勻漿時加的組織量過多;
c.分層后,吸取上清液不足 500μl;
d.吸取水相時混入了有機(jī)相。
3.DNA 污染過多。
可能原因:
a. 樣品勻漿時加的試劑量太少或組織量過多;
b. 樣品中含有有機(jī)溶劑。
解決方法:使用該試劑通?;蚪MDNA 污染含量<0.1ng/μl,如需要徹底去除DNA的污染,請使用Rnase-Free DNase I(貨號:MT0090)消化去除基因組DNA 污染。如使用cDNA 鏈反轉(zhuǎn)錄試劑盒(含基因組去除劑)(貨號:MT0015)則無需提前消化去除基因組DNA 污染,該試劑盒中包含了去除基因組DNA 污染的試劑。
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貨號 | 名稱 | 規(guī)格 |
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名稱:動物RNA提取試劑盒(柱式Trizol)
貨號:BTN71201
規(guī)格:50次
本試劑盒是動物總RNA快速提取試劑動物RNA提取試劑盒(BTN3070)的柱式升級產(chǎn)品,可用于從各種動物組織(包括白細(xì)胞)快速提取總RNA。
試劑盒特點:
1. 操作更加簡單快速,整個過程只需要不到十分鐘(對一個樣品而言)。
2. RNA 純度更高,OD260/OD280一般在2.0左右。
3.一般不含用RT-PCR可以檢測到的基因組DNA污染。
4.適用于培養(yǎng)細(xì)胞、大部分動物組織和部分植物組織。
5. 得到的RNA可直接用于RT-PCR、Northern雜交、cDNA 合成等實驗。
6. 高于進(jìn)口的柱式RNA提取產(chǎn)品。
試劑盒組成:
成分 | 50T |
溶液A | 50ml |
溶液B | 25ml |
離心吸附柱 | 50套 |
通用洗柱液 | 50ml |
RNA 洗脫液 | 10ml |
說明書 | 1份 |
儲存條件:常溫運輸,4℃保存,有效期一年。
使用方法:
下面的操作步驟是針對在1.5mL塑料離心管中進(jìn)行的微量提取的,如果處理樣品量大,請按比例增加各成份的用量并使用大的離心管和離心機(jī)。
1. 根據(jù)組織細(xì)胞類型的不同分為下面及種情況使用:
a)對貼壁細(xì)胞:吸盡培養(yǎng)液,在每10 平方厘米細(xì)胞中加入1mL溶液A,用槍輕柔吹打數(shù)次,確保細(xì)胞全部裂解。
b)對懸浮細(xì)胞:離心收集細(xì)胞,吸盡液體,在每1-5×106 懸浮細(xì)胞中加入1mL溶液A,用槍輕柔吹打數(shù)次,確保細(xì)胞全部裂解。如果是fibroblasts或carcinoma cell,1mL溶液A的細(xì)胞使用量不要超過1×106個細(xì)胞。
c)對新鮮組織:先將剪切成小塊新鮮組織或液氮保存的組織放入10mL或15mL塑料離心管中,每50-100mg 組織加1mL溶液A,用勻漿器勻漿30秒左右。對肝、脾、胰、腎等細(xì)胞分裂十分旺盛的組織(細(xì)胞中含大量正在復(fù)制的DNA),建議組織的使用量不要超過50mg/ mL溶液A,否則十分容易產(chǎn)生DNA污染。
d)對RNAhold 保存組織:先用紙吸去RNAhold液體后再剪切成小塊,其余操作同新鮮組織的處理。
2. 將裂解物轉(zhuǎn)移至一個干凈的1.5mL塑料離心管中,然后加入0.2倍體積的自備氯fǎng(1mL溶液A需0.2mL 氯fǎng),振蕩器上充分振蕩混均30秒。
3. 12000rpm室溫離心3~5分鐘。
4. 將上清液(約0.6-0.8mL的無色透明水相,有時水相比重大時,水相在下層,有機(jī)相即藍(lán)相在上層,吸取時應(yīng)吸取透明水相)轉(zhuǎn)移到一個干凈的1.5mL塑料離心管中。注意:離心后下層有機(jī)相和中間層含有DNA和蛋白質(zhì),避免觸及,否則將產(chǎn)生蛋白質(zhì)和DNA污染。為保險起見,可以留下100μl上清液不取。同時吸取上清時zuì好緩慢進(jìn)行,否則容易吸出交界面的不可見的絲狀DNA。
5. 加入等體積的溶液B,充分顛倒混勻。
6. 將一半的溶液轉(zhuǎn)移到離心吸附柱中,12000rpm室溫離心半分鐘,棄穿透液。
7. 將剩下的一半溶液轉(zhuǎn)移到同一離心吸附柱中,12000rpm室溫離心半分鐘,棄穿透液。
8. 加0.7mL 通用洗柱液到離心吸附柱中,室溫離心半分鐘,棄收集管中的穿透液。一次洗滌一般足夠去除雜質(zhì)。
9. 加0.3mL 通用洗柱液,室溫離心半分鐘,棄穿透液。此步可以省略。
10.室溫12000 rmp離心半分鐘。此步十分重要,否則殘留的通用洗柱液會影響RNA的使用。
11. 將離心吸附柱轉(zhuǎn)移到一自備的RNase-free 收集管中,加入50-100μL RNA 洗脫液。
12.室溫12000 rmp離心半分鐘,離心管中溶液即為RNA樣品,可以立即使用或存放于-80℃待用。
13. RNA的電泳檢測:本試劑盒提取的RNA zuì好用甲醛變性膠電泳,如果在非變性的普通瓊脂糖膠(in TAE或TBE buffer)上電泳,一定要使用RNA 專用上樣液RNAload(操作詳見RNAload 使用手冊),千萬不要使用常用的DNA上樣液,因為DNA上樣液沒有經(jīng)過去RNase處理,也不能將RNA變性,得到的帶型將十分雜亂。
14. RNA 完整性的電泳檢測:如果需要做Northern雜交,強烈建議用戶使用甲醛變性膠進(jìn)行RNA電泳,因為非變性膠不能分離所有的RNA分子(BioTechniques,28:414,2000)。
15. RNA產(chǎn)量產(chǎn)率測定:將5-10μl RNA 溶于TE緩沖液中(pH7.5-8.2 之間)檢測其在OD260的光吸收。通過光吸收可以得出RNA濃度(1 OD260的RNA=40μg/mL),進(jìn)而計算出RNA的產(chǎn)量(濃度×體積)和產(chǎn)率(RNA產(chǎn)量/組織用量)。
16. RNA 純度測定:無污染的總RNA的OD260/OD280一般在1.8-2.1 之間(具體數(shù)值與其堿基組成和溶液成分等多種因素有關(guān)),高于此范圍則分別表示樣品可能有蛋白質(zhì)污染,但一般不影響RT-PCR等反應(yīng)。
疑難解答:
Q:上樣孔里的紅色熒光物一定是DNA污染嗎?
A:不是。用TAE或TBE電泳液和非變性膠電泳RNA時容易產(chǎn)生此現(xiàn)象,我們初步研究發(fā)現(xiàn)大部分紅色熒光物是變性不充分的單鏈RNA通過堿基互補或通過硼酸絡(luò)合(如果使用TBE作電泳液的話)形成的復(fù)合物,加RNase處理后,這些紅色熒光物(RNA)一般會消失。為避免此現(xiàn)象,建議zuì好使用甲醛變性膠電泳和RNA 專用上樣液(如RNAload)。
Q:如何確認(rèn)和去處除污染的基因組DNA?
A:如果懷疑有DNA污染,可以用RNase處理RNA樣品,然后再電泳。如果上樣孔里的紅色熒光物不消失,則表示是基因組DNA污染。進(jìn)一步確認(rèn)可以使用PCR擴(kuò)增法。去除污染的DNA可以使用百奧萊博的非酶的DNA去除劑DNA Scavenger或RNase-free DNase,由于RNase-free DNase一般都有殘留的RNase污染,所以必須嚴(yán)格按照廠家提供的使用說明書進(jìn)行操作。
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