SYA393 豬瘟病毒單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒

產(chǎn)品簡介
北京百奧萊博供應(yīng)的豬瘟病毒單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒用于科研試驗,豬瘟病毒單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒是我司眾多優(yōu)質(zhì)動物疫病PCR檢測試劑盒之一,質(zhì)量堪比同類進(jìn)口產(chǎn)品,價格非常優(yōu)惠,目前正熱烈促銷中,恭候您的咨詢訂購。...
產(chǎn)品詳細(xì)介紹
特別提示:包括豬瘟病毒(CSFV)單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實驗,嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:豬瘟病毒(CSFV)單重?zé)晒釶CR檢測試劑盒
產(chǎn)品貨號:SYA393
產(chǎn)品規(guī)格:48次/盒|96次/盒
一、簡介:
本試劑盒用一對豬瘟病毒特異性引物,結(jié)合一條特異性熒光探針,用一步法熒光RT-PCR技術(shù)對豬瘟病毒RNA進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學(xué)診斷。本試劑盒中豬瘟病毒的探針報告基團(tuán)為FAM。
二、用途:
本試劑盒適用于豬病料、鼻咽拭子、血液等樣本中的豬瘟病毒(CSFV)特異性檢測。適用于豬瘟病毒(CSFV)感染的輔助診斷、監(jiān)測及流行病學(xué)調(diào)查,其檢測結(jié)果僅供臨床參考。
三、試劑盒組成:(48T)
組份 數(shù)量 規(guī)格
豬瘟病毒熒光qRT-PCR反應(yīng)液(CSFV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
無核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
陰性對照(NTC) 1管 50μL/管
陽性對照(PTC) 1管 50μL/管
四、儲存條件及有效期:
本試劑盒于-20℃以下保存,有效期為6個月。
五、熒光PCR儀器適用范圍:
ABI系列,Roche系列等熒光定量PCR檢測儀等。
六、樣品的采集與RNA提取
6.1 樣品的采集
按照相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)采集。標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-80℃,但不能超過6個月,標(biāo)本運送應(yīng)采用0℃冰壺。
6.1.1 血清:用一次性無菌注射器抽取靜脈血2mL,注入無菌的干燥玻璃管,室溫(22-25℃)放置30-60min,血標(biāo)本可自發(fā)完成凝集析出血清,或直接使用水平離心機(jī),3000rpm離心5min,吸取上層血清,轉(zhuǎn)移至1.5mL滅菌離心管。
6.1.2 血漿:用一次性無菌注射器抽取靜脈血2mL,注入含EDTA2Na(乙二胺四乙酸二鈉)或檸檬酸鈉抗凝劑的玻璃管,立即輕輕顛倒玻璃管混合5-10次,使抗凝劑與靜脈血充分混勻,5-10min后即可分離出血漿,轉(zhuǎn)移至1.5mL滅菌離心管。
6.1.3 拭子、分泌物等樣品:在裝有拭子或分泌物的離心管中加入500μL PBS或生理鹽水,劇烈振蕩30s。棉拭子盡量擠出液體轉(zhuǎn)移到無RNA酶污染的離心管中,6000rpm離心20s,取上清備用。
6.1.4 病灶組織樣品:稱取組織約0.1g于研磨器或組織勻漿器中研磨(zuì好置于冰上或加入液氮),再加1mL生理鹽水研磨至無塊狀物,然后將樣品轉(zhuǎn)至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液于1.5mL滅菌離心管中。
6.2 RNA提取
可按常規(guī)方法提取,也可采用商品化試劑盒提取病毒RNA。
6.2.1 取無RNA酶的1.5 mL Eppendorf離心管,做好標(biāo)識。
6.2.2 加入600μL裂解液,200μL樣本,200μLlǜ仿,混勻器上振蕩5 s,4℃ 12000 rpm離心15 min。
6.2.3 吸取步驟6.2.2中的上清液轉(zhuǎn)移至新的無RNA酶的1.5 mL Eppendorf離心管中(避免吸出中間層),加入400 μL 異丙醇,顛倒混勻。
6.2.4 4℃ 12000 rpm離心15 min,棄上清;加入600 μL 75%乙醇。
6.2.5 4℃ 12000 rpm離心10 min,棄上清。打開離心管管蓋,室溫干燥5 min-10 min。
6.2.6 加入10μL 無核酸酶水,溶解管底的RNA,5000 rpm離心5 s,-20℃保存。若長期保存需放置-80℃冰箱。
注:陽性對照和陰性對照為已經(jīng)抽提好的核酸(無需提取),直接取5μL加入到反應(yīng)體系中即可。由于陽性對照濃度較高,建議zuì后在樣品制備區(qū)域加入陽性對照。
七、檢測步驟:
7.1 試劑的準(zhǔn)備
從試劑盒中取出熒光qRT-PCR反應(yīng)液(CSFV-qRT-PCRMIX)、酶混合物(EnzymesMIX),冰上融化并振蕩混勻后,10000rpm離心10s。
設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對照+1管陽性對照),每個測試反應(yīng)體系配制如下表:
試劑 每個反應(yīng)加入的量 N個反應(yīng)加入的量
熒光PCR反應(yīng)液 14μL N×14μL
酶混合液 1μL N×1μL
總量 15μL N×15μL
計算好各試劑的使用量,加入一適當(dāng)體積潔凈離心管中,充分混勻,10000rpm離心10s,向設(shè)定的N個PCR反應(yīng)管中分別加15μL,向每管中加入處理后樣品/陰性對照(NTC)/陽性對照(CSFV-PTC)5μL,10000rpm瞬時離心10秒。
7.2 qRT-PCR反應(yīng)條件
將各反應(yīng)管放入實時熒光PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi)。
推薦循環(huán)條件:
反轉(zhuǎn)錄(Reverse Trans
預(yù)變性 1循環(huán) 95℃ for 10 min
PCR擴(kuò)增 40循環(huán) 95℃ for 15 sec
60℃ for 45 sec
在60℃延伸時收集熒光信號。報告基團(tuán):設(shè)置為FAM。
八、結(jié)果分析
8.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測結(jié)果?;€和閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整,以閾值線剛好超過正常陰性樣品擴(kuò)增曲線的zuì高點為準(zhǔn)。
8.2 試驗成立判定
(1) 陰性對照(NTC):不應(yīng)產(chǎn)生任何的擴(kuò)增曲線。
(2) 陽性對照(CSFV-PTC):均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。
(3) 以上條件應(yīng)同時滿足,否則,此次試驗視為無效。
8.3 結(jié)果判定
(1) 在試驗成立的條件下,Ct值≤35的樣本為陽性,表明CSFV核酸陽性。
(2) Ct值顯示為無的樣本為陰性樣本,表明CSFV核酸陰性。
(3) 如果35<Ct值≤40,判為可疑樣品。對于可疑樣品,先看擴(kuò)增曲線。如果擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,則為可疑陽性,否則判為陰性。
(4) 對于可疑陽性樣品,重新抽提核酸,再次進(jìn)行CSFVqRT-PCR檢測。如果重復(fù)擴(kuò)增曲線為對數(shù)擴(kuò)增曲線,判為樣本陽性,表明CSFV核酸陽性;否則判為樣本陰性。
九、注意事項
(1) 初次使用前請仔細(xì)閱讀說明書。并嚴(yán)格按照說明書步驟操作。
(2) 所有使用的離心管zuì好高壓滅菌,而且必須不含RNA酶。
(3) PCR操作應(yīng)嚴(yán)格按照要求分區(qū)(試劑配制區(qū)、標(biāo)本處理區(qū)、PCR擴(kuò)增區(qū)等),防止實驗室污染。
(4) 樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區(qū)的超凈工作臺進(jìn)行,以免污染。
(5) 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,并按照衛(wèi)生部《微生物生物醫(yī)學(xué)實驗室生物安全通則》進(jìn)行處理。
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