XH006 酵母線粒體DNA提取試劑盒

產(chǎn)品簡介
酵母線粒體DNA提取試劑盒是高品質(zhì)的DNA提取純化產(chǎn)品,由北京百奧萊博供應,本產(chǎn)品用于生化實驗研究等領域,本品質(zhì)量穩(wěn)定,價位合理,需要酵母線粒體DNA提取試劑盒等DNA提取純化產(chǎn)品的客戶,請到我公司官網(wǎng)聯(lián)系我們。...
產(chǎn)品詳細介紹
特別提示:包括酵母線粒體DNA提取試劑盒在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實驗,嚴禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:酵母線粒體DNA提取試劑盒
英文名稱:Yeast Mitocho
產(chǎn)品貨號:XH006
產(chǎn)品規(guī)格:50T|100T
本試劑盒用于從酵母中分離出完整而純化的線粒體DNA。利用差速離心得到比較純凈的線粒體,再利用DNA酶消化和裂解緩沖系統(tǒng)等多步驟去掉核DNA,zuì后得到純凈的線粒體DNA??捎糜赑CR等對純度要求較高的實驗。
試劑盒組成:
組份 | 50T | 100T | 保存溫度 |
DNase I | 12mg | 22mg | -20℃溶解后分裝 |
RNase A | 0.5ml | 1ml | -20℃保存經(jīng)常使用可2~8℃放置 |
蝸牛酶 | 500mg | 1g | -20℃ |
β-巰基乙醇 | 1.0ml | 1.0ml | RT |
山梨醇緩沖液 | 30ml | 60ml | 2~8℃ |
原生質(zhì)體裂解液 | 100mL | 200 mL | 2~8℃ |
線粒體清洗液 | 25 mL | 50 mL | 2~8℃ |
DNA酶反應液 | 6ml | 12ml | 2~8℃ |
線粒體裂解液 | 10ml | 20ml |
常溫放置, 如有沉淀可37℃水浴 |
蛋白沉淀液 | 7.5ml | 15ml | 2~8℃ |
核酸助沉劑 | 0.5ml | 1ml | 2~8℃ |
TE緩沖液 | 25ml | 50ml | 2~8℃ |
保存條件:2~8℃可保存一年,DNASE I、RNase A和蝸牛酶-20℃保存。使用前,在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反應液,分裝后-20℃保存三個月,如果超過三個月,活性可能會降低,請自行訂購DNASE I。線粒體裂解液使用前常溫保存,如有沉淀可37℃水浴溶解,不影響使用。
操作步驟:
準備工作:在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反應液,適當分裝后-20℃保存。線粒體裂解液保存于常溫,如有沉淀37℃水浴溶解,離心機溫度下降到4℃(2~8℃),如無低溫離心機,也可以常溫離心,并將離心時間減半,但zuì后所得DNA品質(zhì)及產(chǎn)量可能會有一定影響。
1.取新鮮培養(yǎng)的1-5ml酵母培養(yǎng)物(約5×107細胞,濕重50mg或者50μl體積)離心后的收集物(4℃,1000×g離心5min)。雙蒸水洗一到兩次。離心,盡量棄上清。取50μl山梨醇緩沖液洗一次,離心,棄上清。
2.酵母沉淀用0.5ml山梨醇緩沖液重懸,加入10mg蝸牛酶,再加入5μl β-巰基乙醇,混勻(如果一次提取樣本較多,可取0.5ml山梨醇緩沖液重懸,加入10mg蝸牛酶,再加入5μl β-巰基乙醇預混勻,混勻后每管樣本加入0.5ml重懸酵母),30℃水浴1-2小時。4℃,1000×g離心5min,棄上清,得到原生質(zhì)體。將得到的原生質(zhì)體用0.5ml原生質(zhì)體裂解液重懸,再次離心,棄上清,得到原生質(zhì)體。
3.將得到的原生質(zhì)體用0.5ml原生質(zhì)體裂解液重懸,并轉(zhuǎn)移到小容量玻璃勻漿器內(nèi),0℃冰浴研磨10~20次;
4.將研磨物放置合適的離心管,4℃,1000×g離心5min;
5.取上清,加入一新的離心管中,4℃,16,000×g離心10min。離心后的上清含胞漿成分,可從中提取胞漿蛋白。將上清轉(zhuǎn)移到新離心管,線粒體沉淀在管底。
6.在線粒體沉淀中加入0.5 mL線粒體清洗液重懸線粒體沉淀,4℃,1000×g離心5min;取上清,加入一新的離心管中,4℃,16,000×g離心10min。棄上清,高純度的線粒體沉淀在管底;
7.加入100μl DNA酶反應液重懸線粒體,吹打均勻后,再加入10μl DNASE I溶液(見準備工作),混勻,37℃水浴10min。此步為消化線粒體表面吸付的核DNA。4℃,16,000×g離心5min。盡可能的棄上清,再加入200μl TE重懸線粒體沉淀,4℃,16,000×g離心5min,洗去殘留的DNA酶。
8.得到的沉淀,用200μl TE緩沖液重懸線粒體沉淀,加入10μl RNase A。加入200μl線粒體裂解液,輕輕混勻(不可吹打),放置1~2min,再加入150μl蛋白沉淀液,迅速混勻。4℃,16,000×g離心5min。此步驟可進一步去除核DNA。
9.取上清,加入一新的離心管中(如用于酶切分析,可加入此步:選用等體積的酚lǜ仿異戊醇25:24:1抽提一次,再用lǜ仿抽提一次,或者直接用lǜ仿抽提兩次,一般來說,此步可去掉一些微量蛋白及糖類,但會造成線粒體DNA的損失,因而用于PCR時可省,并不影響后續(xù)實驗),加入0.6倍體積的異丙醇(如無異丙醇,可加入2.5倍體積的乙醇沉淀DNA,如離心管太滿可分兩管)及5-10μl核酸核酸助沉劑,混勻,-20℃沉淀半小時左右(此步可?。?,4℃,16,000×g離心10min。
10.棄上清,再加入1ml 70%乙醇清洗,4℃,16,000×g離心5min。重復用70%乙醇洗一次。
11.棄上清,再次離心1min吸棄上清,不要碰到管底,開蓋涼干約5-10min。
12.加入20-30μl TE緩沖液,輕彈管底,37℃水浴5分鐘,線粒體DNA溶解。
13.進行DNA電泳檢測及-20℃保存,進行下步的實驗。
注意事項:
1.為保證獲得完整及盡可能多的線粒體,勻漿條件要示:是全程低溫操作。第二是快速。第三,如有條件可將勻漿后的碎片在顯微鏡下觀察。
2.如進行Western Blot和2D-膠電泳,可直接在第6步的沉淀中加入上樣緩沖液裂解線粒體。
3.線粒體DNA本身含量很低,如果電泳檢測不到,可加大上樣量,用更少量的TE溶解沉淀,或者直接進入PCR檢測。
4.以離心力g計算正確的離心速度,不同的離心機可據(jù)此計算離心速度。
一般低溫度心機都有離心力顯示,如果沒有,可以用以下公式簡單的換算。
G=1.11×(10-5)×R×[rpm]2
G為離心力,一般以g(重力加速度)的倍數(shù)來表示;[rpm]2即:轉(zhuǎn)速的平方;R為半徑,單位為厘米。
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貨號 | 名稱 | 規(guī)格 |
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貨號:BTN71206
規(guī)格:50次
本試劑盒是在我司動物DNA提取試劑盒的基礎上改良而得的柱式升級產(chǎn)品,主要用于快速提取新鮮或冷凍的動物組織中的基因組DNA。
產(chǎn)品特點:
1. DNA更加純凈,大多數(shù)DNA樣品的OD260/280值在1.8-1.9之間。
2. DNA產(chǎn)率一般在200μg/g左右(跟組織種類密切相關)。
3.可直接用于PCR、酶切、雜交等后續(xù)反應。
4. 操作更加簡單,離心吸附操作代替離心沉淀,整個過程室溫操作約10分鐘,適合大規(guī)模樣品處理。
5. 安全,本試劑盒對人體,無腐蝕性和刺激性氣味。
6. 高,質(zhì)量和國外同類產(chǎn)品相當,但價格更。
試劑盒組成:
成分 | 規(guī)格 |
溶液A | 40ml |
溶液B | 20ml |
溶液C | 50ml |
離心吸附柱 | 50套 |
通用洗柱液 | 50ml |
DNA洗脫液2.0 | 10ml |
說明書 | 1份 |
儲存條件:常溫運輸和保存、有效期一年。
使用方法:
注意:溶液A容易產(chǎn)生沉淀,溶液B十分粘稠,用前均需要在65℃水浴中加熱使沉淀溶解或粘稠度降低,用前充分搖勻。
1. 根據(jù)使用材料的不同進行下列操作:
a)對貼壁細胞:吸盡培養(yǎng)液,在每10平方厘米細胞中加入0.8mL預熱的溶液A,用槍充分吹打以確保細胞全部裂解,然后把裂解液轉(zhuǎn)移到1.5mL塑料離心管中。
b)對懸浮細胞:離心收集細胞,吸盡液體,在每1-5×106懸浮細胞中加入0.8mL預熱的溶液A,用槍充分吹打以確保細胞全部裂解。然后把裂解液轉(zhuǎn)移到1.5mL塑料離心管中。如果是fibroblasts或carcinoma細胞,0.8mL溶液A的細胞使用量不要超過1×106個細胞。
c)對新鮮或冷凍的組織:先將剪切成小塊的新鮮組織或冷凍保存的組織放入10mL或15mL塑料離心管中,每50-100mg組織加0.8mL預熱的溶液A,用剪切式勻漿器勻漿30秒左右,然后把裂解液轉(zhuǎn)移到1.5mL塑料離心管中。對肝、脾、胰、腎等細胞分裂十分旺盛的組織(細胞中含大量正在復制的DNA),建議組織的使用量不要超過50mg。
d)對DNAhold保存組織:先用紙吸去DNAhold液體后再剪切成小塊,其余操作同新鮮或冷凍組織的處理。
2. 加入0.4mL預熱的溶液B到裂解液中。由于溶液B十分粘稠,可將1mL槍頭剪掉一截再用,也可以用稱量方法加0.4 g。加入溶液B后需要顛倒數(shù)次充分混勻。
3. 65℃水浴5-10分鐘。如果室溫放置,DNA產(chǎn)量將降低10-20%。
4. 加入0.2mL自備lǜ仿,振蕩器上充分振蕩混均30秒,此時溶液將呈乳白色。一定要確保離心管底的液體被震蕩起來。
5. 12000~15000g室溫離心2分鐘。上清透明,中間層為白膜(蛋白層)。
6.小心將上清液平均轉(zhuǎn)移到兩個新的離心管中,避免觸及中間的白膜。
7. 每個管中加入1.5倍體積的溶液C,充分顛倒混勻。
8. 分兩次上柱(即先轉(zhuǎn)移一半的混合液到離心吸附柱中,室溫放置2分鐘,12000~15000g室溫離心半分鐘,棄穿透液,然后再將剩下的混合液到離心吸附柱中,室溫放置2分鐘,12000~15000g室溫離心半分鐘,棄穿透液)。
9. 加0.7mL通用洗柱液到離心吸附柱中,12000~15000g室溫離心半分鐘,棄穿透液。
10. 加0.3mL通用洗柱液到離心吸附柱中,12000~15000g室溫離心半分鐘,棄穿透液。
11. 12000~15000g室溫再離心半分鐘。此步十分重要,否則殘留的通用洗柱液會污染DNA。
12.室溫放置半分鐘使殘留乙醇揮發(fā)。
13. 將離心吸附柱轉(zhuǎn)移到一新的1.5mL塑料離心管中,加入50-100μL DNA洗脫液2.0,室溫放置離心吸附柱1-2分鐘。
14. 12000~15000g室溫離心半分鐘,離心管中溶液即為DNA樣品,可以立即使用或存放于冰箱待用。

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