鯉春病毒血癥是高品質(zhì)的動(dòng)物疫病PCR檢測(cè)試劑盒產(chǎn)品，由北京百奧萊博供應(yīng)，本產(chǎn)品僅用于生物化學(xué)研究方面，本產(chǎn)品質(zhì)量好，且具價(jià)格，深為用戶(hù)稱(chēng)道，了解更多鯉春病毒血癥等動(dòng)物疫病PCR檢測(cè)試劑盒產(chǎn)品請(qǐng)聯(lián)系我司咨詢(xún)訂購(gòu)。...

特別提示：包括鯉春病毒血癥(SVC)單重?zé)晒釶CR檢測(cè)試劑盒在內(nèi)，本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實(shí)驗(yàn)，嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途！

產(chǎn)品名稱(chēng)：鯉春病毒血癥(SVC)單重?zé)晒釶CR檢測(cè)試劑盒
產(chǎn)品貨號(hào)：SYA510
產(chǎn)品規(guī)格：48次/盒



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名稱(chēng)：禽流感病毒(AIV-M)通用型單重?zé)晒釶CR檢測(cè)試劑盒（定性/定量）
貨號(hào)：SYA320
規(guī)格：48次/盒|96次/盒
一、簡(jiǎn)介：
禽流感病毒實(shí)時(shí)熒光qRT-PCR檢測(cè)試劑是按照美國(guó)農(nóng)業(yè)部(USDA)的檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)和我國(guó)《禽流感病毒通用熒光RT-PCR檢測(cè)方法》(GB/T 19438.1-2004)而制備的商業(yè)化檢測(cè)試劑盒。本試劑盒為中的探針報(bào)告基團(tuán)為6-FAM，淬滅基團(tuán)為MGB。本方法可定性檢測(cè)所有亞型禽流感病毒。

二、用途：
本試劑盒適用于檢測(cè)各種禽類(lèi)喉咽棉拭子、泄殖腔棉拭子、各種組織樣品、尿囊液及細(xì)胞培養(yǎng)液等?？捎糜谇萘鞲胁《靖腥镜妮o助診斷、監(jiān)測(cè)及流行病學(xué)調(diào)查，其檢測(cè)結(jié)果僅供參考。

三、試劑盒組成：(48T)
組份 數(shù)量 規(guī)格
熒光qRT-PCR反應(yīng)液(AIV-qRT-PCR MIX) 1管 672μL/管
酶混合物(Enzymes MIX) 1管 48μL/管
無(wú)核酸酶水(Nuclease-Free Water) 1管 500μL/管
陰性對(duì)照(NTC) 1 管 50μL/管
陽(yáng)性對(duì)照(AIV-PTC) 1 管 50μL/管

四、儲(chǔ)存條件及有效期：
本試劑盒于-18℃以下保存，有效期為6個(gè)月。

五、熒光PCR儀器適用范圍：
ABI系列，Roche系列等熒光定量PCR檢測(cè)儀等。

六、樣品的采集與RNA提取
6.1 樣品的采集
按照標(biāo)準(zhǔn)《高致病性禽流感診斷技術(shù)》(GB/T 18936-2003 )和《禽流感病毒通用熒光RT-PCR檢測(cè)方法》(GB/T 19438.1-2004 )進(jìn)行樣品的采集。
6.2 樣品RNA提取
可按常規(guī)方法提取，也可采用商品化試劑盒提取病毒RNA。
（1） 取滅菌的1.5 mL Eppendorf離心管，做好標(biāo)識(shí)。
（2） 每管加入600 μL裂解液，分別加入被檢樣本200 μL，再加入200 μLlǜ仿，混勻器上振蕩混勻5 s，于4℃ 12000 r 離心15 min。
（3） 取無(wú)RNA酶的1.5 mL Eppendorf離心管，加入-20℃預(yù)冷400μL異丙醇，吸取步驟(2)各管中的上清液轉(zhuǎn)移至相應(yīng)的管中，避免吸出中間層，顛倒混勻。
（4） 于4℃ 12000 r離心15 min，棄上清，倒置于吸水紙上，沾干液體；加入600μL 75％預(yù)冷乙醇，洗滌。
（5） 于4℃ 12000 r離心10 min，棄上清，倒置于吸水紙上，沾干液體。
（6） 10000 r離心10 s，用微量加樣器將其吸干，室溫干燥5 min～10 min。
（7） 加入10μL 無(wú)核酸降解酶的水，溶解管底的RNA，5000 r離心5 s，冰上保存?zhèn)溆?。若需長(zhǎng)期保存須放置-70℃ 冰箱。
 注：陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照為已經(jīng)抽提好的核酸(無(wú)需提取)，直接取5μL加入到反應(yīng)體系中即可。由于陽(yáng)性對(duì)照濃度較高，建議zuì后在樣品制備區(qū)域加入陽(yáng)性對(duì)照。

七、檢測(cè)步驟：
7.1 試劑的準(zhǔn)備
從試劑盒中取出熒光qRT-PCR反應(yīng)液(AIV-qRT-PCR MIX)、酶混合物(Enzymes MIX)，冰上融化并振蕩混勻后，10000rpm離心10s。
設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對(duì)照+1管陽(yáng)性對(duì)照)，每個(gè)測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表：
試劑 每個(gè)反應(yīng)加入的量 N個(gè)反應(yīng)加入的量
熒光PCR反應(yīng)液 14μL N×14μL
酶混合物 1 μL N×1 μL
總量 15 μL N×15μL
計(jì)算好各試劑的使用量，加入一適當(dāng)體積潔凈離心管中，充分混勻，10000r離心10s，向設(shè)定的N個(gè)PCR反應(yīng)管中分別加入15μL，向每管中加入處理后樣品或陰性對(duì)照(NTC)和陽(yáng)性對(duì)照(AIV-PTC)5μL，10000rpm瞬時(shí)離心10秒。
7.2 real time RT-PCR反應(yīng)條件
將各反應(yīng)管放入定量PCR儀器的反應(yīng)槽內(nèi)。
推薦循環(huán)條件:
反轉(zhuǎn)錄(Reverse Transcription) 1循環(huán) 45℃ for 5 min
預(yù)變性 1循環(huán) 94℃ for 30 sec
PCR擴(kuò)增(PCR amplification ) 40循環(huán) 94℃ for 5 sec
60℃ for 30 sec
在60℃延伸時(shí)收集熒光信號(hào) 。報(bào)告基團(tuán)：設(shè)置為FAM。

八、結(jié)果分析：
8.1 結(jié)果分析條件設(shè)定
直接讀取檢測(cè)結(jié)果?；€和閾值設(shè)定原則根據(jù)儀器噪聲情況進(jìn)行調(diào)整，以閾值線剛好超過(guò)正常陰性樣品擴(kuò)增曲線的zuì高點(diǎn)為準(zhǔn)。
8.2 試驗(yàn)成立判定
（1） 陰性對(duì)照(NTC)：不應(yīng)產(chǎn)生任何的擴(kuò)增曲線。
（2） 陽(yáng)性對(duì)照(AIV -PTC)：均產(chǎn)生擴(kuò)增曲線。
（3） 以上條件應(yīng)同時(shí)滿(mǎn)足 ，否則，此次試驗(yàn)視為無(wú)效。
8.3 結(jié)果判定
（1） 在試驗(yàn)成立的條件下，Ct值≤35的樣本為陽(yáng)性，表明AIV核酸陽(yáng)性。
（2） Ct值顯示為無(wú)的樣本為陰性樣本，表明AIV核酸陰性。
（3） 如果35＜Ct值≤40，判為可疑樣品。對(duì)于可疑樣品，先看擴(kuò)增曲線。如果擴(kuò)增曲線為對(duì)數(shù)擴(kuò)增曲線，則為可疑陽(yáng)性，否則判為陰性。
（4） 對(duì)于可疑陽(yáng)性樣品，重新抽提核酸，再次進(jìn)行AIV qRT-PCR檢測(cè)。如果重復(fù)擴(kuò)增曲線為對(duì)數(shù)擴(kuò)增曲線，判為樣本陽(yáng)性，表明AIV核酸陽(yáng)性；否則判為樣本陰性。

九、注意事項(xiàng)：
（1） 初次使用前請(qǐng)仔細(xì)閱讀說(shuō)明書(shū)。并嚴(yán)格按照說(shuō)明書(shū)步驟操作。
（2） 所有使用的離心管zuì好高壓滅菌，而且必須不含RNA酶。
（3） PCR操作應(yīng)嚴(yán)格按照要求分區(qū)(試劑配制區(qū)、標(biāo)本處理區(qū)、PCR擴(kuò)增區(qū)等)，防止實(shí)驗(yàn)室污染。
（4） 樣本提取、試劑配置、加樣需在不同區(qū)的超凈工作臺(tái)進(jìn)行，以免污染。
（5） 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待，并按照衛(wèi)生部《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。


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