WE0182 水產(chǎn)動物基因組提取試劑盒

產(chǎn)品簡介
水產(chǎn)動物基因組提取試劑盒的品牌是百奧萊博,是優(yōu)質(zhì)的DNA提取純化產(chǎn)品,本制品用于生化實(shí)驗(yàn)研究等領(lǐng)域,本品質(zhì)量穩(wěn)定,價位合理,需要水產(chǎn)動物基因組提取試劑盒等DNA提取純化產(chǎn)品的客戶,請到我公司官網(wǎng)聯(lián)系我們。...
產(chǎn)品詳細(xì)介紹
特別提示:包括水產(chǎn)動物基因組提取試劑盒在內(nèi),本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實(shí)驗(yàn),嚴(yán)禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途!
產(chǎn)品名稱:水產(chǎn)動物基因組提取試劑盒
英文名稱:Marine Animal DNA Extraction Kit
產(chǎn)品貨號:WE0182
產(chǎn)品規(guī)格:50次
本試劑盒適合于從多種水產(chǎn)動物(如魚類、蝦類、貝類等)組織中提取總DNA。純化過程不需苯酚或lǜ仿等有機(jī)溶劑,無需乙醇沉淀。本試劑盒采用優(yōu)化的緩沖體系使裂解液中的DNA特異的結(jié)合到硅膠質(zhì)離心吸附柱上,其他污染物可流過膜,蛋白、PCR和其他酶促反應(yīng)的抑制劑可通過兩步有效的洗滌步驟被有效去除,zuì后使用低鹽緩沖液或水洗脫,即可獲得高純度DNA。純化得到的DNA可以直接用于酶切、PCR、Real-Time PCR、文庫構(gòu)建、Southern Blot、分子標(biāo)記等下游實(shí)驗(yàn)。
試劑盒組成:
組份 | 50次 |
Buffer GTL | 15ml |
Buffer GL | 15ml |
Buffer GW1(濃縮液) | 13ml |
Buffer GW2(濃縮液) | 15ml |
Buffer GE | 15ml |
蛋白酶K | 25mg |
蛋白酶K 儲存液 | 1.25ml |
吸附柱DM及收集管 | 50套 |
自備試劑:無水乙醇。
實(shí)驗(yàn)前準(zhǔn)備及重要注意事項(xiàng):
1、向蛋白酶K 中加入1.25ml 蛋白酶K 儲存液使其溶解,-20℃保存。配制好的蛋白酶K 勿長時間室溫放置,避免反復(fù)凍融,以免影響其活性。
2、樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融,否則會導(dǎo)致提取的DNA片段較小且提取量也下降。
3、次使用前應(yīng)按照試劑瓶標(biāo)簽說明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入無水乙醇。
4、使用前請檢查Buffer GTL和Buffer GL是否出現(xiàn)結(jié)晶或者沉淀,如有結(jié)晶或者沉淀,Buffer GTL和Buffer GL于56℃水浴重新溶解。
5、如果下游實(shí)驗(yàn)對RNA污染比較敏感,可以在加入Buffer GTL后加入4μl DNase-Free的RNase A(100 mg/ml),RNase A本試劑盒并未提供,如需要可單獨(dú)向本公司訂購,貨號:WE0225S。
不同水產(chǎn)動物組織提取得率:
樣本 | 建議孵育時間 | DNA得率 |
貝類組織 | 0.5 h | 12-20μg |
蝦組織 | 1 h | 8-14μg |
魚組織 | 1 h | 15-40μg |
操作步驟:
1、取不超過30 mg組織材料,液氮充分研磨后,放入離心管(自備)中,加入200μl Buffer GTL,渦旋振蕩15秒。
注意:
1)根據(jù)提取的組織不同,起始量也有不同,腮的細(xì)胞量較大,一般建議提取量不超過20 mg。
2)如需去除RNA,可在上述步驟完成后,加入4μl 100 mg/ml 的RNase A溶液(貨號:WE0225S),震蕩混勻,室溫放置5-10分鐘。
2、加入20μl 蛋白酶K ,渦旋混勻,簡短離心,使管壁上的溶液收集到管底。56℃孵育,直至組織完全溶解,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
注意:不同組織裂解時間不同,通常需0.5-2小時即可完成。對于難裂解組織可以適當(dāng)延長孵育時間。
3、加入200μl Buffer GL,充分顛倒混勻,70℃孵育10分鐘,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
注意:加入Buffer GL時可能會產(chǎn)生白色沉淀,一般70℃放置時會消失,不會影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮,說明細(xì)胞裂解不徹底,可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
4、加入200μl無水乙醇,充分顛倒混勻,此時可能出現(xiàn)絮狀沉淀,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。
5、將步驟4所得到的溶液全部加入到已裝入收集管的吸附柱DM中,若一次不能加完溶液,可分多次轉(zhuǎn)入。12000rpm(~~13400×g)離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。
6、向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
7、向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前檢查是否已加入無水乙醇),12000rpm離心1分鐘,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱放回收集管中。
注意:如需進(jìn)一步提高DNA純度,可重復(fù)步驟7。
8、12000rpm離心2分鐘,倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫?cái)?shù)分鐘,以徹底晾干。
注意:這一步目的是將吸附柱中殘余乙醇去除,乙醇?xì)埩魰绊懞罄m(xù)酶促反應(yīng)(酶切、PCR等)。
9、將吸附柱置于一個新的離心管中,向吸附柱中間部位懸空加入50-200μl Buffer GE,室溫放置2-5分鐘,12000rpm離心1分鐘,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
注意:
1)如果下游實(shí)驗(yàn)對pH值或EDTA敏感,可以用滅菌水洗脫。洗脫液的pH值對洗脫效率有很大影響,若用水做洗脫液應(yīng)保證其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH將水的pH值調(diào)到此范圍),pH值低于7.0時洗脫效率不高。
2)離心之前室溫孵育5分鐘可以增加產(chǎn)量。
3)用另外的50-200μl Buffer GE或滅菌水再次洗脫可以增加產(chǎn)量。
4)如果要提高DNA的終濃度,可以將步驟9所得的DNA洗脫液重新加至吸附膜上,重復(fù)步驟9;若洗脫體積小于200μl,可以增加DNA的終濃度,但可能會減少總產(chǎn)量。如果DNA的量小于1μg,推薦用50μl Buffer GE或滅菌水洗脫。
5)因?yàn)楸4嬖谒械腄NA會受到酸性水解作用的影響,如需長期保存,推薦用Buffer GE洗脫并于-20℃保存。
儲存條件:室溫(15~30℃)。
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名稱:菌體內(nèi)毒素清除劑
貨號:BTN90901
規(guī)格:200mL
內(nèi)毒素是E.coli細(xì)胞壁的主要成分,傳統(tǒng)的去除內(nèi)毒素的方法是將內(nèi)毒素和DNA一起純化出來,然后再用各種方法去除其中的內(nèi)毒素,操作繁瑣,DNA 回收率低。本產(chǎn)品可以直接把E.coli 表面的內(nèi)毒素去除,從根本上避免了內(nèi)毒素對后續(xù)操作(如質(zhì)粒DNA提取,重組蛋白質(zhì)提取)的污染。
產(chǎn)品特點(diǎn):
1. 個在菌體收集階段去除內(nèi)毒素的產(chǎn)品,從源頭上避免了內(nèi)毒素跟DNA和胞漿蛋白的接觸,從根本上防止了可能產(chǎn)生的污染。
2. 操作簡單快速,用酶溶液溫和清洗菌體3-4次即可去掉細(xì)菌表面的內(nèi)毒素,只需要10分鐘左右時間,不需要復(fù)雜儀器設(shè)備。
3.,能去除99%以上的內(nèi)毒素。
4.跟各種質(zhì)粒DNA提取、基因組DNA提取和蛋白質(zhì)提取等操作兼容,DNA丟失率只有10%左右(其他方法DNA 丟失率可以高達(dá)50%)。
5. 不影響DNA和大部分蛋白質(zhì)的活性,處理過的質(zhì)粒DNA可用于轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)。
6. 既可小規(guī)模使用(在1.5mL離心管內(nèi)),也可放量用于大規(guī)模無內(nèi)毒素質(zhì)粒DNA提取和無內(nèi)毒素蛋白質(zhì)純化。
儲存條件:常溫運(yùn)輸和保存,有效期一年。
使用方法:
一:用于菌液小于3mL的樣品
1. 收集1.5-3mL E.coli 飽和菌液,12000rpm離心1分鐘,棄上清,得到細(xì)菌沉淀。
2. 加入1mL 本產(chǎn)品溫和混勻后10,000-12000rpm離心1分鐘,棄上清(含內(nèi)毒素)。
3. 再重復(fù)上述操作3-4次,得到的菌體可以直接進(jìn)入后續(xù)的無內(nèi)毒素質(zhì)粒DNA提取或無內(nèi)毒素蛋白質(zhì)提取程序。
二:用于菌液多于3mL的樣品
整個操作同上,只是在15或50mL塑料離心管中進(jìn)行,離心速度不能超過離心管的承受力,本產(chǎn)品的用量按比例增加。
疑難解答:
Q:為何用常規(guī)的方法很難去除生物樣品中的內(nèi)毒素?
A:因?yàn)閮?nèi)毒素帶電性跟DNA和部分蛋白質(zhì)相同,所以基于帶電性的分離方法(如硅膠膜吸附,離子交換吸附)不能將它們分開;同時內(nèi)毒素又是雙性分子(類似于細(xì)胞膜的磷脂分子),能夠形成大小不等的聚合物,跟質(zhì)粒DNA和蛋白質(zhì)大小接近,所以基于分子量大小的分離方法(如凝膠排阻過濾和氯化銫超速離心)也不能將其有效分離。

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