微量樣品基因組DNA提取試劑盒（是高品質的DNA提取純化產(chǎn)品，由北京百奧萊博供應，本產(chǎn)品用于生化實驗研究等領域，本品質量穩(wěn)定，價位合理，需要微量樣品基因組DNA提取試劑盒（等DNA提取純化產(chǎn)品的客戶，請到我公司官網(wǎng)聯(lián)系我們。...

特別提示：包括微量樣品基因組DNA提取試劑盒（離心吸附柱法)在內(nèi)，本公司的所有產(chǎn)品僅可用于科研實驗，嚴禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途！

產(chǎn)品名稱：微量樣品基因組DNA提取試劑盒（離心吸附柱法)
英文名稱：Extraction kit for genomic DNA from minute sample
產(chǎn)品貨號：WH0005
產(chǎn)品規(guī)格：50次

本試劑盒用于從小劑量的血液、干血點、血清/血漿、微量組織、漱口水、毛發(fā)、微切割組織等微量樣品中提取基因組DNA，所得基因組DNA可直接用作PCR模板、酶切、雜交等分子生物學實驗。本試劑盒采用可以特異性結合核酸的離心吸附柱和獨特的緩沖液系統(tǒng)，樣品裂解后，DNA在高鹽條件下與硅膠膜結合，在低鹽、高pH值時DNA從硅膠膜上洗脫下來。

試劑盒組成：

組分	50T
緩沖液GA	15ml
緩沖液GB	15ml
緩沖液GD	13ml
漂洗液PW	15ml
洗脫緩沖液TB	15ml
Proteinase K	1 ml
Carrier RNA	310μg
RNase-Free ddH2O	1 ml
RNase-Free吸附柱CR2	50個
收集管（2 ml)	50個

保存條件：室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存12個月，更長時間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時間，必要時可在37℃水浴中預熱10min，以溶解沉淀。Carrier RNA配置成儲液后置于-20℃。

Carrier RNA的作用：
試劑盒中提供了一種特殊Carrier RNA，當需要從非常少量的樣品中提取基因組DNA時，推薦在操作步驟中加入Carrier RNA，這樣有助于提高DNA與吸附柱的結合。

Carrier RNA儲存液的配制：
在次使用Carrier RNA時，請將Carrier RNA（310μg）溶解在310μl RNase-Free ddH2O中，將溶液分裝儲存于-20℃，此時該溶液的濃度為1 μg/μl；該儲存液應避免反復凍融，凍融次數(shù)不能超過3次。

自備試劑：提取毛囊樣本需備DTT、無水乙醇、RNaseA（可選)

注意事項：（請務必在使用本試劑盒之前閱讀此注意事項)
1．樣品使用量的確定：
  吸附柱zuì大容量：700 μl
  zuì小洗脫體積：20 μl
  抗凝全血（哺乳動物）：zuì大量100 μl
  樣品使用zuì大量（動物組織）：zuì大量10mg
2．若緩沖液GA或GB中有沉淀，可在37℃水浴中重新溶解。
3．所有的樣品使用前請平衡到室溫（15-25℃)。
4．次使用試劑盒時，請按照試劑瓶上的提示在緩沖液GD和漂洗液PW中添加無水乙醇。
5．為了確保從微量樣本中得到更多的DNA，試劑盒配備了Carrier RNA。由于Carrier RNA本身是小核酸，所以得到的基因組測定OD₂₆₀值會比真實值偏大，建議將得到的基因組直接用PCR進行檢測。

使用方法：

一、從少量血中提取基因組DNA
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
1．取1-100 μl血液到1.5 ml的離心管中。
2．不足100 μl的血液樣本加緩沖液GA補足到到100 μl。
3．加入10 μl的Proteinase K溶液。
  注意：如果需要去除RNA，可加入5 μl RNase A （100mg/ml)溶液（目錄號：WH0217)，振蕩15 sec，室溫放置5 min。
4．加入100 μl的緩沖液GB（如果zuì初所取血液樣品體積為1-10 μl，請加入1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl），輕輕顛倒混勻，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。56℃溫浴10min，并不時輕搖樣品。
  注意：加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀，一般56℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹底，可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
5．加入50 μl乙醇（96-），如果室溫超過25℃，請將乙醇置冰上預冷。輕輕顛倒混勻樣品，室溫放置3 min。簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
6．將上一步所得溶液都加到一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
9．重復操作步驟8。
10．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
11．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min,12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

二、從干血點中提取基因組DNA
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
1．取三片3×3mm的樣品到1.5 ml的離心管中。
2．加入180 μl的緩沖液GA。
3．加入20 μl Proteinase K溶液，輕輕顛倒混勻。56℃孵育1h，期間每10min渦旋10 sec。
4．加入200 μl的緩沖液GB和1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl，輕輕顛倒混勻，70℃孵育10min，期間每3 min渦旋10 sec。孵育結束后簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
  注意：加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀，一般70℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹底，可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
5．加入200 μl的乙醇（96-）。如果室溫超過25℃，請將乙醇置冰上預冷。輕輕顛倒混勻樣品，室溫放置5 min，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
6．將上一步所得溶液都加到一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
9．重復操作步驟8。
10．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
11．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

三、從血清/血漿中提取循環(huán)核酸/游離核酸
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
1．取100 μl -200 μl血清/血漿到2ml的離心管中，如不足100 μl，加緩沖液GA到100 μl終體積。
2．加入20 μl Proteinase K溶液，渦旋混勻。
3．加入200 μl的緩沖液GB （如血清/血漿體積<50 μl，可加入1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl），輕輕顛倒混勻，56℃孵育10min，并不時搖動樣品。簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
  注意：加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀，一般56℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹底，可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
4．加入200 μl的乙醇（96-）。如果室溫超過25℃，請將乙醇置冰上預冷。輕輕顛倒混勻樣品，室溫放置5 min，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
5．將上一步所得溶液添加到一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
6．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇）,12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．重復操作步驟7。
9．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
10．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

四、從漱口水中提取基因組DNA
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
1．在50 ml無菌管中添加10-20 ml漱口水樣品，800rpm （~1,800×g)離心5 min，將上清小心倒掉。
2．向沉淀中添加200 μl緩沖液GA重懸，將全部懸液轉移至1.5 ml離心管中。
3．加入20 μl Proteinase K溶液，渦旋10 sec混勻，56℃放置60 min，期間每15 min渦旋混勻數(shù)次。
4．加入200 μl緩沖液GB和1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl，充分顛倒混勻，70℃放置10min，期間每3 min渦旋10 sec。此時溶液應變清亮，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
  注意：加入緩沖液GB時可能會產(chǎn)生白色沉淀，一般70℃放置時會消失，不會影響后續(xù)實驗。如溶液未變清亮，說明細胞裂解不徹底，可能導致提取DNA量少和提取出的DNA不純。
5．加200 μl無水乙醇，充分顛倒混勻，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
  注意：加入無水乙醇后可能會出現(xiàn)絮狀沉淀，但不影響DNA提取。
6．將上一步所得溶液和絮狀沉淀加入一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
9．重復操作步驟8。
10．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
11．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)（可以用NaOH將水的pH值調到此范圍)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

五、從毛囊中提取基因組DNA
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
請?zhí)崆皽蕚?M DTT溶液。
1．材料處理：含毛囊的毛發(fā)：在1.5 ml離心管中加入250 μl緩沖液GA，20 μl蛋白酶K，20 μl 1M DTT，混勻。從毛發(fā)根部毛囊處取1cm長的一段，與上述溶液渦旋混勻10 sec。
2．在56℃孵育直到樣本充分降解消化。需要時間至少60 min,期間每隔20 min渦旋10 sec混勻；或者置于水浴振蕩儀中消化。簡短離心以收集附著在管壁及管蓋的液體。
  注意：裂解時間根據(jù)樣本不同有所差異，一般毛發(fā)需要1h；過夜消化也可，且過夜消化對整個實驗沒有太大影響。羽莖樣本不會完全消化，對于未消化完全的羽莖樣本，可以直接離心，取上清液進行后續(xù)實驗。
3．添加300 μl緩沖液GB和1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl（Carrier RNA儲存液配置見第2頁），充分混勻。
4．56℃水浴10min，期間每3min渦旋混勻10 sec。
5．添加300 μl無水乙醇，充分渦旋混勻。簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
6．將上一步所得溶液和絮狀沉淀分兩次加入一個吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm （~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
9．重復操作步驟8。
10．12000rpm （~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
11．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

六、從微量組織中提取基因組DNA
使用前請先在緩沖液GD和漂洗液PW中加入無水乙醇，加入體積請參照瓶上的標簽。
1．取不超過10mg的組織到1.5 ml的離心管中，立即加入180 μl緩沖液GA，室溫放置，使離心管溫度平衡到室溫。
2．加入20 μl Proteinase K溶液，渦旋混勻10 sec。
3．在56℃孵育直到樣本充分降解消化，需要時間大約30 min到1h，期間每15 min需要渦旋混勻；或者置于水浴振蕩儀中消化。簡短離心以收集附著在管壁及管蓋的液體。
4．加入200 μl的緩沖液GB和1 μl Carrier RNA儲存液，濃度為1 μg/μl，充分顛倒混勻，70℃放置10min，期間每3 min渦旋混勻10 sec，溶液應變清亮，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
5．加入200 μl的乙醇（96-）。如果室溫超過25℃，請將乙醇置冰上預冷。輕輕顛倒混勻樣品，室溫放置5 min，簡短離心以去除管蓋內(nèi)壁的液滴。
6．取上一步所得溶液全部轉入吸附柱CR2中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
7．向吸附柱CR2中加入500 μl緩沖液GD（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
8．向吸附柱CR2中加入600 μl漂洗液PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇）12000rpm（~13400×g)離心30 sec，棄廢液，將吸附柱CR2放回收集管中。
9．重復操作步驟8。
10．12000rpm（~13400×g)離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱CR2置于室溫放置2-5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。
  注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會影響后續(xù)的酶反應（酶切、PCR等）實驗。
11．將吸附柱CR2轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜中間位置懸空滴加20-50 μl洗脫緩沖液TB，室溫放置2-5 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min，將溶液收集到離心管中。
  注意：洗脫緩沖液體積不應少于20 μl，體積過小影響回收效率。為增加基因組DNA的得率，可將離心得到的溶液再次加入吸附柱CR2中，室溫放置2 min，12000rpm（~13400×g)離心2 min。洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液應保證其pH值在7.0-8.5范圍內(nèi)，pH值低于7.0會降低洗脫效率；且DNA產(chǎn)物應保存在-20℃，以防DNA降解。

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名稱：柱式骨骼DNA提取試劑盒
貨號：BTN91102
規(guī)格：50次
本試劑盒專門用于從動物骨骼(包括骨粉)樣品中提取DNA的產(chǎn)品，20次規(guī)格足夠50次微量提取。

產(chǎn)品特點：
1. 微量提取，一次可以處理300mg左右的骨骼(但需要先將骨粉變成骨粉)。
2. 柱式操作，方法簡單，整個過程只需要40-60分鐘。
3. 得到的DNA分子量不均勻，一般在20 Kb到100bp之間，具體取決于骨骼的新鮮程度，骨粉的加工方法等。
4. 得到的DNA可以直接用于PCR或熒光PCR反應。

試劑盒組成：

成分	規(guī)格
溶液A	50mL
溶液B	15mL
溶液C	30mL
離心吸附柱	50套
通用洗柱液	50mL
DNA洗脫液2.0	10mL
說明書	1份

儲存條件：常溫運輸，4℃保存，有效期一年。

使用方法：
1. 骨粉的制備：用自備酒精將骨骼表面擦洗干凈，以防污染物對后續(xù)PCR的影響，然后用骨鉆在處理干凈的骨骼區(qū)域鉆取骨粉。對于已經(jīng)制備好的、商品化的骨粉，可以跳過此步，直接進入下一步。
2. 用天平稱取0.2克骨粉，轉移到2mL塑料離心管中。
3. 加入1mL溶液A到骨粉中，充分振蕩30秒混勻。(注意：溶液A在4℃放置后可能會產(chǎn)生沉淀，使用前必須放在65℃水浴使沉淀徹底溶解并充分搖勻后再取用，且骨粉加到溶液A中后會特別黏稠，需使勁振蕩混勻。)
4. 65℃水浴放置30分鐘。
5. 加入0.3mL的溶液B和0.2mL的自備lǜ仿，充分振蕩30秒混勻。
6. 12000rpm室溫離心3分鐘，小心將上清液轉移到一個新的塑料離心管中。
7. 加入0.5mL溶液C，顛倒混勻。
8. 將混合液分兩次轉移到離心吸附柱中，每次轉移后需要 12000rpm室溫離心1分鐘，并棄收集管中的穿透液。
9. 加入0.5mL通用洗柱液到離心吸附柱中，12000rpm室溫離心1分鐘，棄收集管中穿透液。
10. 再加入0.5mL通用洗柱液到離心吸附柱中，12000rpm室溫離心1分鐘，棄收集管中穿透液。
11. 12000rpm室溫離心半分鐘，棄含穿透液的收集管。此步干甩十分重要，否則殘留的液體會抑制后續(xù)的PCR。
12. 將離心吸附柱套入到一個自備的干凈的1.5mL塑料離心管中，在離心吸附柱的濾膜的中部加入30μL DNA洗脫液，然后室溫放置2分鐘。如果先將DNA洗脫液預熱到60-80℃再使用，效果更佳。
13. 12000～15000g室溫離心1分鐘，離心管中收集的樣品即為骨骼DNA。
14. 取少量進行電泳檢測。注意：一般DNA都呈現(xiàn)彌散狀，分布在20 Kb到100bp這一廣泛的范圍，其比例跟骨骼(或骨粉)的新鮮程度、加工過程(對骨粉)等因素密切相關。
15. DNA樣品可以直接用于PCR，也可放-20℃長期保存。

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